线粒体转氢酶-1（TH-1）试剂盒说明书
微量法 100管/96样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义
TH位于线粒体的内膜上，又称为呼吸电子传递链复合体六，催化NADH+NADP+和 NAD++NADPH相互转化。催化正向反应称为TH-1。线粒体NADH含量增加时会导致线粒体膜的H+电化学梯度升高，因而促进了电子传递链上ROS的产生。TH-1促进NADH转换为NADPH，从而提高线粒体的抗氧化能力。
测定原理
NADH和NADPH均在340nm有特征吸收，因此TH催化的转氢反应不能导致340nm吸光度发生变化。用人工合成底物3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸磷酸（APADP+）替代NADP+，TH-1催化 APADP+还原生成的APADPH在375nm有特征光吸收，因此通过测定375nm光吸收增加速率，来计算TH-1活性。
需自备的仪器和用品
可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制
试剂一：液体100mL×1瓶，-20℃保存；
试剂二：液体50mL×1瓶，-20℃保存；
试剂三：液体18mL×1瓶，4℃保存；
试剂四：粉剂×1支，-20℃保存；
试剂五：粉剂×1支，-20℃保存；
样本的前处理：
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：
测定步骤：
（1）工作液的配制：临用前将试剂四、五转移到试剂三中混合溶解，置于37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴5min；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
（2）在微量石英比色皿或96孔板中加入20μL样本和180μL工作液，混匀，立即记录375nm处初始吸光值A1和 10min后的吸光值A2，计算ΔA=A2-A1。
TH-1活性计算
a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下
（1） 按样本蛋白浓度计算
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟产生1 nmol APADPH定义为一个酶活性单位。
TH-1活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(V样×Cpr)÷T=149×ΔA÷Cpr
（2） 按样本鲜重计算
单位的定义：每g组织每分钟产生1 nmol APADPH定义为一个酶活性单位。
TH-1活性（nmol/min /g 鲜重）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=74.5×ΔA÷W
（3） 按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟产生1 nmol APADPH定义为一个酶活性单位。
TH-1活性（nmol/min /104 cell）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.149×ΔA
V反总：反应体系总体积，2×10-4 L；ε：APADPH摩尔消光系数，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V样：加入样本体积，0.02 mL；V样总：加入提取液体积，0.5mL；T：反应时间，10 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500万。
b.用96孔板测定的计算公式如下
（1） 按样本蛋白浓度计算
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟产生1 nmol APADPH定义为一个酶活性单位。
TH-1活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(V样×Cpr)÷T=298×ΔA÷Cpr
（2） 按样本鲜重计算
单位的定义：每g组织每分钟产生1 nmol APADPH定义为一个酶活性单位。
TH-1活性（nmol/min /g 鲜重）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=149×ΔA÷W
（3） 按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟产生1 nmol APADPH定义为一个酶活性单位。
TH-1活性（nmol/min /104 cell）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.298×ΔA
V反总：反应体系总体积，2×10-4 L；ε：APADPH摩尔消光系数，6.7×103 L / mol /cm；d：96孔板光径，0.5cm；V样：加入样本体积，0.02 mL；V样总：加入提取液体积，0.5mL；T：反应时间，10 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500万。
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资料/datasheet
